为什么计数要选择30-300的大肠菌群平板计数法?如果不在30-300,是不是要重新稀释?

为什么选择30-300的平板计数_百度知道
为什么选择30-300的平板计数
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小于30说明稀释倍数太大,菌液浓度分布不均,各平板之间菌落数差异会很大,造成误差.大于300菌落的生长受到抑制,并且难以区分各个菌落准确计数,造成误差.
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请问连续两个稀释度的菌落计数都是不在30-300内,那结果怎么算?
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10的负5次方:两个皿,一个计数是409,一个是398
10的负6次方:两个皿,一个计数是17,一个是12
单位均为CFU/mL
那么请问,最终出结果是该怎么计算?写什么?
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6里的7.1.6已结详细说明了: 若所有稀释度的平板菌落数均不在30CFU~300CFU之间,其中一部分小于30CFU或大于 300CFU时,则以最接近30CFU或300CFU的平均菌落数乘以稀释倍数计算
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6里的7.1.6已结详细说明了: 若所有稀释度的平板菌落数均不在30CFU~300CFU之间,其中一部分小于30 ...
所以不需要用那个公式计算?
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所以不需要用那个公式计算?
就是直接以最接近的平均菌落数乘以稀释倍数啊····针对这种情况就用这种计算方法
(山有木兮木有枝)
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(17+12)/2×10^6
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就是直接以最接近的平均菌落数乘以稀释倍数啊····针对这种情况就用这种计算方法
好的,明白了,谢谢
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(17+12)/2×10^6
了解,谢谢了
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菌落数大于300,记录为多不可计,,如果最高稀释倍数的记录为多不可计,那么这次实验数据就是微生物超标呗,要么因为无菌实验操作不当,重新做一次;要么就是产品真的出问题了,那就分析分析原因
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楼主的这个结果其实还是存疑的!同一稀释度的两块平板的平行性没有问题,但是相邻两个稀释度平板的10倍数关系,用ISO 的附录表格的规则来折中地对照一下,是有很大问题的。
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楼主的这个结果其实还是存疑的!同一稀释度的两块平板的平行性没有问题,但是相邻两个稀释度平板的10倍数关 ...
因为不成倍数关系,所以结果有问题?
但是有没有可能因为添加的某种的物质会对菌有抑制作用,但当稀释了之后抑制作用不明显了。
例如就是10^0,10^-1,第一个没有菌,但第二个却长菌了。
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因为不成倍数关系,所以结果有问题?
但是有没有可能因为添加的某种的物质会对菌有抑制作用,但当稀释了 ...
要么在检验的时候,就采取措施消除抑菌物质的作用;要么就直接将不合理稀释度的数据舍弃。
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考虑到样品和微生物分布的 不均性以及取样的误差问题,还有其他抑菌因素 ,稀释倍数这么大& & 做出的这个结果 已经算不错了&&,完全遵循十倍出现的结果可能性不大&&
楼上说结果存疑的观点 我是不认同
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为什么菌落计数时应选取菌落数在30~300之间的平板
为什么平板菌落计数时应选取稀释培养后,菌落数在30~300之间的平板来计算??请教各位大虾.
请问您做的事自外诱变以后稀释的平板吗?我记得是因为这个是正常菌落诱变的范围,就这么简单
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统计菌落数目为什么要选30-300之间的计数?
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如果实际操作三块板子,计数为31、299、289,那么31的还要用来算平均值吗?一般实验真是这种情况,我一般会舍弃31吗,重新做,从统计学来看,31偏离其他数据太多了,应该不符合统计学意义。请教,这样做有问题吗?选30-300,是不是为了方便计数呢,太少可能可能会出现数据之间偏差大,太多实际计数容易出错?高中生物人教版选修一第24页这个“为了保证结果准确,一般选择菌落数在30-300的平板进行计数”,有没有前提——是要有统计学意义、数据不能偏离太远这一点呢?
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上课不认真听讲了吧。做菌落计数的时候,你不知道多少细菌,都是做10倍连续稀释的,然后选择30-300这个范围,比如某个菌稀释了1万倍是289个,稀释10万倍是35个,计数的时候要把这两个一起计,换算成同一稀释倍数后求平均值。至于为什么是这个范围,因为多了你数不清,少了更不准确
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如果是同一稀释度下得到31、299、289,该如何计数?
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丁香园版主
kien 如果是同一稀释度下得到31、299、289,该如何计数?操作失误可能较大,重复实验吧。建议下次涂布涂4个
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关于丁香园苹果六SPlus我买时候是2018年 为什么激活时间是2015年的 还有手机内存三十六G 查的是十_百度知道
苹果六SPlus我买时候是2018年 为什么激活时间是2015年的 还有手机内存三十六G 查的是十
我在官网上查了确实是翻新机亲自查给他看她不认账 死活不认账说要我自己拿去检测 要证据怎么办啊 我要不要报警啊怎么维护自己权益啊 好迷茫啊 求救啊
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苹果6代系列,目前只有32G版的金色iphone6还在继续生产,其余都停产了。不知你为啥还要买停产的型号。可以报警,你就直接说在哪家店买的,警察自会查证据
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拨打12315维权,那个是消费者权益部门的
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