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迅数新MF3显微细胞分析、菌落计数筛选、抑菌圈测量联用仪
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杭州迅数科技有限公司
杭州市西湖科技园西园八路11号B座405室
中国区市场部
产品详细描述
&&& MF系列多功能一体机是由菌落和抑菌圈成像系统、显微成像系统及图像分析软件构成的，有助于实现微生物常规实验的智能化：显微细胞观察和分析、菌落自动计数和筛选、抑菌圈测量和效价分析。高端实用型的新MF3是迅数科技推出的原MF系列的升级产品，专为大型检测机构而设计。配置奥林巴斯CX31显微镜，可以轻松捕获锐利、清晰、平坦的显微图像，便于显微观察和分析。&
显微图像分析
显微图像采集
&&& &动静态双路并行观察技术&将显微光学图像转为数字信号，可在液晶屏上轻松观察显微细胞的运动，随时抓取高清静态图片。
显微测量功能
&&& 可以精确测量颗粒的直径、角度、弧度、周长、面积，以及手动绘制的任意直线、弧线、曲线的长度等，并自动生成测量结果。
图像处理与编辑
&&& 内置27种图像处理方法，如自适应增强、彩色分量增强、图像平整、边缘锐化、滤波、边缘检测、形态学运算等，可显著提高显微观察效果，满足高端用户的特殊需求。文字和图形嵌入工具，为科研论文的写作提供帮助。
颗粒自动统计
&&& 具备大量统计功能，可对颗粒、细胞进行快速计数，如区域统计、直径分类统计、颜色识别统计、粘连分割、杂质剔除、鼠标点击统计等。
全封闭暗箱拍摄
&&& 采用全封闭、宽光带照明技术，符合人体工学的舷窗门设计，隔绝环境光的干扰，彻底消除杂散光在玻璃培养皿折射形成的光斑、光环现象，为精确活菌计数提供了必备的光影条件。上光源呈360度柔性混合光照明，可突显菌落的色泽和纹理；下光源为晶锐悬浮式暗视野照明，可以清晰勾勒菌落轮廓。
三色LED混合光源、色温调节
&&& 科学研究希望能真实反应菌落的色泽，而白光LED照明成像偏蓝。迅数采用低功耗、环保型三色LED混合光，通过暖色光和冷色光的配比，控制色温范围为k，拍摄出最真实的菌落色泽。
辅助光源－－双波长紫外
&&& 内置254nm紫外灯,可解决菌落仪长期使用带来的污染问题，也能满足紫外诱变的需要。双侧366nm紫外照明设计能激发菌落荧光，满足大肠埃希氏菌、绿色荧光蛋白等的观察。
常见菌落计数
&&& 迅数为常见平皿的菌落计数问题，如细菌、霉菌、放线菌、霉菌和酵母、大肠菌群、金黄色葡萄球菌、网格滤膜、3M测试片、螺旋平皿等，提供了方便快捷的一键智能统计和高级统计工具。
复杂菌落计数-多菌混杂
&&& 某些培养皿会出现细菌、霉菌、酵母、放线菌混杂生长的情况，这使菌落统计变得非常困难，适合某类菌的分割算法可能不适合其他菌。迅数的&反式统计&模块是专为解决此类复杂问题而设计，可实现多菌混杂平皿中菌落的准确分割和统计。
复杂菌落计数-菌落与培养基相似
&&& 微生物实验经常会遇到菌落色泽和培养基很相近的情况，一般算法难以实现菌落的精确识别和分割。迅数菌落仪具备的多处理算法可以为用户提供更多的解决方案。
复杂菌落计数-晕圈干扰
&&& 微生物培养过程中菌落周围常出现可溶性色素或溶血圈等，迅数&多相水平集活动轮廓模型&可以很好地解决这类问题。
复杂菌落计数-显色培养基
&&& 利用显色培养基进行微生物的筛选分离，其反应的灵敏度和特异性大大优于传统培养基。迅数&RGB约束的水平集活动轮廓模型&适合显色致病菌的识别和统计。
杂质剔除统计-形态学过滤
&&& 微生物菌落计数过程中常存在杂质问题：如未经过滤的样本直接注入培养皿，培养基中存在不溶物、气泡、琼脂凝块等。利用菌落与杂质在形态学上的差异，如大小、颜色、轮廓等，设置一定条件，可滤除特定的杂质。
杂质剔除统计-智能识别算法多样性
&&& 迅数菌落智能识别算法的多样性，为杂质、杂菌的剔除提供了丰富的工具。如&动态调节统计&可准确识别放线菌，而不受培养基中不溶性成分的干扰。
杂质剔除统计-曝光控制
&&& 通常经过48小时培养（或更长时间），菌落已清晰可见。适当控制光照强度、缩短曝光时间，可使菌落充分展现，而细小杂质则因曝光不足被滤除。
杂质剔除统计-背景切换
&&& 通过背景切换，可加大菌落与杂质的反差，从而实现菌落的准确识别。如褐色中药粉末，在悬浮式暗视野照明条件下，褐色粉末与黑背景融合，使得灰白菌落突显，避免了药渣的干扰。
&&& 迅数为抑菌圈、透明圈、变色圈、生长圈等双圈问题提供了专门的特性分析工具，通过精确测量外圈直径和菌落直径，自动计算二者面积比和直径比。根据比值的大小自动排序，定位出相应的菌落，可用于抗生素、酶制剂、有机酸等的筛选。
菌种筛选－－菌体形态变异分析
&&& 有些菌体的形态变异与产量的变异存在着一定的相关性，筛选工作中应尽可能捕捉、利用这些直接的形态特征性变化，将变异菌株筛选出来。迅数基于水平集活动轮廓模型理论，利用菌落在大小、轮廓、色泽等方面的微小特征差异，可准确识别目标菌落。
霉菌一键式测量
&&& 传统的菌丝生长速率、霉菌生长量、菌丝生长抑制率、室内毒力测定等霉菌研究实验采用十字交叉法测量菌落生长直径。由于多数霉菌菌落蔓延、疏松、边缘发散不规则，测量的人为误差大，效率低。迅数&霉菌一键测量&模块，只需用&魔棒&在菌落边缘点击一次，即可瞬间测出大霉菌的面积、周长、长径、短径。
抑菌圈测量
Szone&多模式测量技术
&&& 管碟扩散法要求抑菌圈圆而边缘清晰，但实验中仍会出现抑菌圈边缘不清晰、破裂等情况，迅数Szone&抑菌圈多模式测量技术，运用三种不同的高速算法，精确提取构成抑菌圈边缘的像素点，从而完成高精测量。
抗生素效价测定
&&& 符合中国药典2010版二剂量法、三剂量法及合并计算要求。高清晰成像、高精度数字测量保证了效价测定精度。重复性自检的相对误差小于0.01％；均匀性自检的相对误差小于0.05％；效价测量精度大于99.7％。
舒巴坦敏感&-内酰胺酶检验
&&& 抗生素残留问题成为影响乳制品安全的重要因素之一。为了测试牛奶中是否添加&-内酰胺酶，迅数提供了一款快速测量和智能判断软件，通过纯水验证、平行样本检测、平均值计算，智能判别&-内酰胺酶阳性或阴性。
主要功能与技术指标
一、菌落、抑菌圈数字成像
&&& 1、光源
&& &&&&&&&& 可见光：高亮三色LED结构光
&&& &&&&&&& 254nm紫外：用于腔体消毒、紫外诱变
&&&&&&&&&&& 366nm紫外：激发大肠埃希氏菌、大肠菌群荧光、绿色荧光蛋白
&&& 2、光路与照明控制
&& &&&&&&&& 全封闭暗箱：消除环境杂散光干扰
&& &&&&&&& 上光源：场景式360&柔性无影光照明
& &&&&&&&& 下光源：晶锐悬浮式暗视野照明
&&&&&&&&&& 上光、下光、双光、紫外，自由切换
&&&&&&&&&& 色温可调（K）、光强可调&
&&& 3、光电转换
&&&&&&&&&& 高清工业定焦镜头
&&&&&&&&&& 1000万像素专业型CMOS相机
二、菌落计数与筛选
&&& 1、基本菌落计数功能
&&&&&&&&&& 平皿类型：倾注、涂布、膜滤、螺旋平皿、3M纸片、多孔板
&&&&&&&&&& 一键智能计数（6模式）
&&&&&&&&&& 全皿菌落统计：菌落总数统计，并按25档尺寸分类显示
&&&&&&&&&& 区域选择统计：可选择圆形、矩形、任意圈定区域进行统计
&&&&&&&&&& 直径分类统计：设置直径范围，统计特定大小的菌落
&&&&&&&&&& 鼠标点击统计：快速标记、添加菌落，适合培养皿边缘菌落的计数
&&&&&&&&&& 菌落粘连分割：自动分割相互粘连的菌落，链状菌落由用户选择分割或不分割
&&& 2、高级菌落统计功能
&&&&&&&&&& 螺旋菌落统计
&&&&&&&&&& 动态调节统计
&&&&&&&&&& 偏差预估统计
&&&&&&&&&& 水平集多模型算法
&&&&&&&&&& 特定菌落统计
&&&&&&&&&& 反式统计
&& &&&&&&& 高粘连菌统计
&&& 3、网格滤膜与3M测试片
&&&&&&&&&& 黑色实线网格一键统计
&&&&&&&&&& 3M细菌总数测试片、3M金黄色葡萄球菌测试片：一键统计
&&&&&&&&&& 3M大肠菌群测试片、3M大肠杆菌/大肠菌群快速测试片：一键统计+人工选择
&&& 4、典型菌筛选
&&&&&&&&&& 杂菌、杂质剔除
&&&&&&&&&& 单色分类统计
&&&&&&&&&& 多色自动聚类
&&&&&&&&&& 指定多色筛选
&&&&&&&&&& 透明圈特性分析
&&&&&&&&&& 双色圈自动筛选
&&& 5、菌落特征描述
&&&&&&&&&& 细菌、酵母、霉菌、放线菌，菌落特征数字化描述
&&& 6、专项分析
&&&&&&&&&& 串联统计
&&&&&&&&&& 并联统计
&&&&7、高级工具
&&&&&&&&&& 网格清除：消除滤膜网格背景干扰
&&&&&&&&&& 人工计数修正：添加或删除菌落
&&&&&&&&&& 排除污染区域：鼠标勾勒任意污染区域，自动剔除污染区域的菌落数
&&&&&&&&&& 背景文字消除：自动消除记号笔干扰
&&&&&&&&&& 背景斑纹去除：自动消除培养皿污渍干扰
&&&&&&&&&& 人工粘连分割：手动分割多重粘连菌落
& &&&&&&&& 参数自动换算：培养皿直径、样本稀释度输入，实现自动换算
&&&&&&&&&& 文字、图形标注
&&& 8、标定与测量
&&&&&&&&&& 仪器标定：仪器自带标定、人工修正标定
&&&&&&&&&& 一键式快速测量：一键测定大菌落，适合真菌、放线菌的单菌落分析
&&&&&&&&&& 全皿自动测量：全皿菌落的等效直径、面积、长短径、周长、圆度分析
&&&&&&&&&&&手动精确测量：长度、角度、弧度、面积、弧线、任意曲线
三、抑菌圈测量与分析
&&& 1、Szone 抑菌圈多模式测量技术
&&&&&&&&&& 自动检测：基于抑菌圈轮廓的精确边缘检测，适合边缘清晰、圆形抑菌圈
&&&&&&&&&& 拟圆逼近：基于抑菌圈轮廓的圆形拟合逼近，适合边缘破裂、非标准圆形抑菌圈
&&&&&&&&&& 人工检测：鼠标点击抑菌圈边缘上三点成圆，适合边缘模糊的抑菌圈
&&& 2、抗生素效价测定
&&&&&&&&&& 一剂量法效价检测：适合美国药典
&&&&&&&&&& 二剂量法、三剂量法及合并计算：适合中国药典2010版
&&&&&&&&&& 重复性自检：相对误差&0.01%、重复测量精度 &0.002mm&&&&
&&&&&&&&&& 均匀性自检：相对误差&0.05%
&&&&&&&&&& 台间测量差异&0.2%
&&& 3、舒巴坦敏感&-内酰胺酶检验
&&&&&&&&&& 纯水验证：根据（A）、（B）、（D）产生抑菌圈，D-CR3， B-AQ3 ，判定系统成立
&&&&&&&&&& 自动检测三个平行样本的（A）、（B）、（C）、（D）抑菌圈，并数据导入
&&&&&&&&&& 自动计算平行试验平均值，智能判别结果的阴阳性。
&&&&&&&&&& 无效报告自动预警
四、数据库与图像处理模块
&&& 1、图像处理与编辑
&&&&&&&&&& 图像调节、自适应增强、锐化、滤波、边缘检测、形态学运算
&&& 2、数据库
&&&&&&&&&& 数据存储、智能查询
&&&&&&&&&& 数据导出：统计结果以Excel表导出
&&&&&&&&&& 数据安全：操作者使用权限,数据修改权限设置
五、显微细胞分析模块
&&& 1、显微成像
&&&&&&&&&& 显微镜：OLYMPUS CX31显微镜
&&&&&&&&&& 500万像素专业显微CMOS相机
&&&&&&&&&& 分 辨 率：0.5-1.0微米
&&&&&&&&&& 图像显示、转换
&&&&&&&&&& 图像显示：实时动态观察，随时捕捉任意视野图像
&&&&&&&&&& 图像观察：具有旋转、放大、缩小、镜像转换、局部观察功能
&&&&&&&&&& 图像编辑：具有对图像任意区域剪切、复制、粘贴及文字输入等功能
&&& 2、显微图像处理
&&&&&&&&& 自适应增强：通过对原图像进行与其特征匹配的分辨增强处理，使图像更清晰,边缘更明
&&&&&&&&&& 显,以便进行图像细微结构的观察与识别。
&&&&&&&&&& 图像调整：图像亮度、对比度、饱和度、RGB三色任意调节，灰度图、负相图的转换
&&&&&&&&&&&图像补偿：通过线性补偿，对数补偿，贝尔补偿等多种数学方法对图像的失真部分进行
&&&&&&&&&& 补偿，使图像更加清晰。
&&&&&&&&&&&图像锐化：通过增强图像的高频分量，使图像边缘变得更清晰。
&&&&&&&&&& 图像平整：通过图像平整处理，使图像背景均匀。
&&&&&&&&&& 图像滤波：高斯滤波、低通滤波、中值滤波等6种滤波方式有效提高图像清晰度。
&&&&&&&&&& 边缘检测：两种检测方式、三种算子结合多种检测选项更精确地提取图像轮廓。
&&&&&&&&&& 形态学处理：腐蚀、膨胀、开启、闭合等非线性数学形态学处理。
&&& 3、目标测量
&&&&&&&&&& 标 定：具有对系统在线标定功能，实现精确测量（系统内置默认标定值）
&&&&&&&&&&&测量功能：对颗粒直径、长度、弧度、角度、任意曲线、面积等的在线测量
&&& 4、颗粒统计
&&&&&&&&&& 自动统计：自动颗粒计数，并显示每个颗粒的面积、周长、直径、圆度等形态参数
&&&&&&&&&& 区域统计：可选择长方形、圆形、伞形等任意形状区域进行统计
&&&&&&&&&& 直径分类统计：设置直径范围，统计特定大小的颗粒
&&&&&&&&&& 颜色识别统计：根据色度、亮度、饱和度筛选特定颗粒
&&&&&&&&&& 鼠标点击统计：鼠标点击添加或删除颗粒，方便、快捷
&&&&&&&&&& 粘连分割处理：根据用户需求可自动或手动分割相互粘连的颗粒
&&&&&&&&&& 多种统计算法：采用多种分割算法，适合不同背景的颗粒统计
&&&&&&&&&& 多样本统计：对多张显微图像的综合统计
&&&&&&&&&& 参数自动换算：根据统计区域面积、样本稀释度，实现自动换算
&&& 5、绘图与标注
&&&&&&&&&& 绘图：对打开的图像可根据需要，绘制直线、矩形、圆形、以及任意曲线
&&&&&&&&&& 文字编辑：对打开的图像进行文字编辑
&&&&&&&&& &标注：可方便的进行直线和角度的标注
六、仪器规格与配置
&&&&&&&&&& 新MF3 多功能一体机主机
&&&&&&&&&& OLYMPUS CX31三目生物显微镜、摄像转接口&&&&&&& &&&&&&&&&
&&&&&&&&&& 显微镜电子目镜（500万像素CMOS）&&&& &&&&&&&&&
&&&&&&&&&& 菌落分析软件、自动抑菌圈测量软件、抗生素效价测定软件、舒巴坦敏感&-内酰胺酶检
&&&&&&&&&& 验软件、显微分析软件
&&&&&&&&&& 高端一体电脑
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如何利用显微镜目镜测微尺来测量目标物体的实际长度
&&& Q：在没有分析软件，无法定标的情况下怎样利用目镜测微尺来测量目标物的实际长度呢？
&&& A：1）一般目镜测微尺上会标有一小格的实际大小，利用格数来算就好，不过这是粗略的方法；如果有测微台尺，应该拿台尺来校正目镜测微尺，以求更加准确。
&&& 2）0.01mm物镜测微尺与10&分划目镜的用法
&&& 首先，介绍两个概念：0.01mm物镜测微尺为格值0.01mm的玻璃尺,10&分划目镜（即目镜测微尺）是在10&目镜上加上格值为0.1mm的分划板目镜。
&&& 根据国家标准，显微镜的物镜放大倍数允许有5%的误差，因此在进行精确测量时，需要对物镜的倍数进行校准：
&&& 在载物台上放置0.01mm的物镜测微尺，把需要校测的物镜旋转并调焦使成像清晰。用10&分划目镜观察。例如：40&物镜0.01mm的格值放大后在目镜刻尺上度量，若恰好放大成0.4mm，则正好是40&;实际测量并不是1小格（0.01mm）为一度量单位，而应以5格或10格（低倍时甚至50格）为一度量单位，以消除测量误差。如10&物镜经50个0.01mm格值放大成49个0.1mm格值后， 实际放大倍数为49&0.1/(50&0.1)=9.8。然后取下物镜测微尺，放上切片，读出被观察区域在目镜的数值，假设为5个格值，即0.5mm，除以实际放大倍数9.8，得出被观察区域的实际大小为0.5/9.8=0.051mm。
&&& 计算公式：被观察区域的大小=被观察区域在分划目镜上的读数/物镜的实际倍数
&&& 如果不用物镜测微尺校准物镜实际倍数，就等于默认物镜表面所刻的放大倍数为实际倍数。用血球计数板的误差主要来自那些方面?应如何避免误差,
用血球计数板的误差主要来自那些方面?应如何避免误差,
本人多次使用血球计数板 一点经验 供交流交流废话不多讲 关于使用方法什么的想来你也知道了 直接进入正题1,首先样品要尽量纯净,杂质多的话肯定影响你计数了2,样品浓度要适中,太浓,你数不过来 太稀,计数肯定不准确.我的板子是25*16的,计数的时候每次计4个角加中间共五个格子,每个格子要求最低不少于5个对象颗粒,一般10~50个是比较理想的情况!3,上面说到每次计数五个格子,这样一般要做3个重复,得到数据后取平均值,更严格的话就计5个重复.另外如果某一次的计数偏离其他计数数据很多,就要舍弃这次计数值,只计算其他几次的均值.另外 你可真抠 一分不给来问问题~!
与《用血球计数板的误差主要来自那些方面?应如何避免误差,》相关的作业问题
血细胞计数的误差分别来源于技术误差和固有误差.其中由于操作人员采血不顺利,器材处理、使用不当,稀释不准确,细胞识别错误等因素所造成的误差属技术误差；而由于仪器（计数板、盖片、吸管等）不够准确与精密带来的误差称仪器误差,由于细胞分布不均匀等因素带来的细胞计数误差属于分布误差或计数域误差（filed error）.仪器误差
1,活细胞和死细胞不易分开,数出来的细胞是活的和死的总合2,细胞溶液必须均匀,再用之前要震荡均匀,否则细胞沉在试管底部,容易出现误差
多用表测电流和电压时误差主要由多用表的精度决定.一般多用表的精度为2.5级,即误差范围为±2.5％. 用此表测得的电压和电流值比真实值偏小,说明此表是负误差.
应从实验仪器和人为因素两方面进行考虑.实验仪器：利用水作为导电介质,实验误差大；等臂探针的上下两臂弹簧片与探针很难难用眼睛调成一条直线,总会出现一些差异产生误差.人为因素：作图的真确性；测量圆半径时的误差.差不多就这些,自己再完善一下就好了~
消除的：1、视准轴不垂直横轴误差.2、横轴不垂直竖轴误差.3、还有其他一些不主要的误差.不能消除的：竖轴倾斜误差.
分别注释,两处用同一个注释编号
1、√40=2√106.3=2×3.15∵√10＞3.15∴√40＞6.32、3-√5/2=3-√10/25/8=3-3+5/8=3-19/8∵√10/2=4√10/8＜19/8∴3-√5/2＞5/83、∵√3与³√5均大于0,∴（√3）六次方=27（³√5）六次方=25∴√3＞³√5
一、仪器的误差：一方面是仪器制造加工不完整而引起的,另一方面是仪器检验校正后残余误差.二、观测误差：仪器对中误差、目标偏心误差三、外界条件的影响
1、测量值跟真实值之间的差异叫做误差；2、错误是在测量过程中,不遵守仪器的操作规程以及读数时由于粗心大意把数字或单位弄错了引起的.3、误差与错误有本质的区别：错误是应该而且可以避免的；误差是测量过程必然存不可避免的----只能尽可能减小误差.4、误差的产生：一方面是由于测量工具的精密度引起的,另一方面是由于进行测量的人
全新机械表大部分都会在开始时间,走时会快,一段时间后就正常了.正常后手表仍然会有误差,精准的表误差大概在正负五秒以内每日.国家规定是日差不出正负45秒都为合格品.所以,你的TT力洛克是完全正常的.
指精确到小数点后一位,如取3.7,也可取3.6（因为根号13.6=3.688…）；误差小于1时,取整数即可,如取3,也可取4.
圆度和同轴度
相对误差.对比精度,跟量程没关系 ,用更高精度的标准器是要比对在某一点或小范围内的测量精度.比如：早50mm处,一个检测得是50.01,一个是50.05,则用相对误差很容易看出哪个精度高.
最小测量值,跨度
试验时造成误差的因素通常可以考虑以下几个方面的因素：1、人,不同的人进行同一个试验时,因为手法上的细微不同都会造成试验结果上的误差.因此通常在不要大量手动操作的试验中,需要由同一个人来操作,这样出来的数据才比较有可比性；2、机,设备仪器,这里就要考虑试验仪器本身是否存在着误差.通常实验室的仪器设备每年都要进行校准检定.
在定量分析中,( 偶然)误差影响测定结果的精密度,（系统）误差影响测定结果的的准确度.
从测量学的角度来看,所有连续量的测量都会有误差,例如长度、速度、时间、力、加速度等,都不可避免地有误差.离散量的测量则可以没有误差,例如测量人的个数、粒子的个数等等,因为结果为整数,没有需要估读的小数部分,当不确定度远远小于整数的时候,就不会有误差出现.减小测量误差的办法有很多,一般的办法是改进检测原理,减小原理误差；
这肯定是出现了过拟合了,你可以做一下改进.1.处理一下数据集,也就是说重新划分训练集和测试集2.换一个误差检验函数3.调整一下隐节点个数4.控制学习次数
这个是正常的.主要是投影变形影响的.把西瓜皮展成平面后东西方向的变形较大. 再问： 坐标增量X和Y Y的差距好大啊企业简介：
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小百科：（Optical Microscope）
物镜与目镜为凸透镜。物镜的焦距短，目镜的焦距长。
物镜的倒立放大实像再经目镜放大成倒立放大的像。
可见光为一连续色光,白光会产生色散现象,白光非单一色光，因此，在经过三稜镜时，会因为红光与紫光的折射率不同
而产生色光分离，称为色散现象。
紫光偏折最大，红光偏折最小,折射率随着光的波长增加而递减→因此，红光波长较长，折射率较小。
折射率亦随着光的频率增加而递减→因此，紫光频率较大，折射率较大。
型号一览：
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显微图像分析的误差
同其它任何仪器一样，图像分析系统在使用过程中由于仪器本身的原因，人为原因等因素会带来各种误差。特别是在测量吸光度参数时，由于摄像机的不线性，显微镜视杨光不均匀、电压不稳引起的视杨光线的变化、样本染色的不一致或不均匀等都会使及光度参数发生错误。只有了解这些误差的来源才能有效地防止各种误差的影响，使测量的结果更加可靠。
　　仪器误差包括摄像机不线性带来的误差，摄像机的电子噪声，分割时的阈值设置误差，标定误差等等。
摄像机不线性带来的误差
　　在用CCD摄像机将显微镜下的光图像转换为电信号图像的过程中，输入的光信号与输出的电信号之间不是一个线性的关系。当光线比较暗时，电荷偶合器不易冲上电，在其输出端产生的电流很小，因而在灰度的低端数字是很不准的。只有当光强度达到定强点后，输入的光信号和输出的电信号之间才是线性的关系。
　　有些文章认为这条曲线应该校正为直线，其线性度要求达到0.99。本人认为从数学上很容易做到这种校正的结果，但是在实际的应用中光学衰减片和标准密度片在显微镜下进行标定或调整时，由于物镜的放大倍率使其标定或调整的重复性很差，不易得到真实地校正曲线。而且在整个灰度范围内都校正为线性的，其低亮度部分需要加的改正系数很大，势必带来很大的误差。我们建议使用曲线中满足线性度要求的线性段来测量，即可以符合对测量线性度的要求，又不需要作复杂的线性校正。
显微镜视场光不匀的误差
　　显微镜照射到样本上的光线在整个视场内是否均匀，是显微定量分析的必要条件。如果视场本身不均匀，同一个细胞落在屏幕不同的位置上测量的结果不同，这就推动定量的意义。因此，国际分析细胞学会要求用同一个细胞在屏幕27个位置上测量的结果的变异系数要小于2%。
　　新近出产的OLYNPUS平视 场显微镜下，视场的照射光基本上是均匀的。早期的显微镜视场特别不均匀，蹭和四周的亮度相差最大可达到30~40个灰度级。尽管通过各种校正可减少视场不均匀带来的误差，但是，显微镜本身误差很大，有限的校正是不可能完全支队这种影响的。所以作为定量分析使用的显微镜应该选择性能优良的显微镜。
　　视场光线不均匀可利用图像分析软件提供的功能进行检测，例如MPIAS系统便提供了两种检测方式。一种是动态的检测功能，通过&动态灰度测量&定义的小矩形框测量屏幕上蹭种四周的灰度值，找出其间的差值。一种是&测背底&对冻结后的屏幕图像进行灰度测量。
　　对视场光线不匀的影响一般图像分析系统都可以进行校正，操作时先采集一幅空视场的图像作为背底图像存储在系统中，之后采集细胞图像时，将这两幅图像进行相减运算，减去引起视场不匀部分的灰度。便可消除视场不匀带来的误差。另外，如果采用屏幕上每个点的入射光灰度值作为吸收光的参照值进行吸光度计算，而不是以屏幕上最亮的点作为参照值，也可以有效地消除视场光不匀的影响。
样本最大吸收光和照射光波不一致误差
灰度阈值设置误差
　　细胞的测量最后都要通过阈值分割，将需要测量的细胞与背底灰度分离开来。阈值设置过大会引起测量的细胞面积变大，阈值设置过小会引起测量的细胞面积变小。在多幅图像测量过程中，忽大忽小的阈值会带来较大的误差。因此，灰度阈值不仅设置要准确，而且还要求一致。
分辨率和标定误差
　　这里讨论的只是图像的空间分辨率的误差。数字图像是由点阵组成的，如果所测量的物体组成的点阵较小，其测量误差较大。例如，一个测量的细胞长度如果有100个像素点组成，其长度测量的精确度不会忧于1%；如果其长度只有10个像素点，其长度测量的精确度还会优于10%。一般要求测量物体在屏幕上最小要有一个平方厘米大小为宜。
　　在测量过程中，图像分析系统一般都要在每个物镜下进行长度定标，得出各个物镜下像素点所代表的实际长度。定标过程也会引入误差，假定定标尺的实际长度是L，在屏幕上该长度由X个像素点组成，从而每个像素点所代表的实际长度为L/X。可以推断，定标结果的精确度不可能优于(1/X)*100%。例如在下10倍的物镜下定标尺的实际长度是500m，在屏幕上该长度由600个像素点组成，从而每个像素点所代表的实际长度为500/600=0.8333m/像素，而定标的精确度将小于1/500x100%=0.16%。标定过和带来的相对误差将随X的增大而减小。如果我们在屏幕上只是选择较小的一段标尺来定标，例如只选用250m的长度来一标，其定标的精确度将小于1/250x100%=0.40%。因此，为了减小定标过程带来的误差，在屏幕上应该尽可能选择满屏的定标尺寸来定标。另外，由于摄像机各显微镜在水平方向的垂直方向不可能做到完全一致，好的显微镜和摄像机这两个方向不会出现很大的误差，质量较差的显微镜和摄像机会出现百分之几的误差。因此，图像系统最好在水平和垂直方向上都进行定标，然后根据定标结果校正其误差。
　　在显微图像测量过程中，有些细胞不可避免地会落在屏幕的边缘上。如果测量边缘的细胞会因为细胞不全带来边缘误差。为了减小这类误差，国外的有些图像分析仪设置了防护区（guard region）图5.2b所示。设置了保护区后，细胞在测量框内或框上的测量，测量框以外的不测量。当保护区的宽度等于或大于细胞的最大投影直径时，保护区的设置可以完全消除边缘误差。如果细胞的最大投影直径大于保护区的宽度，则保护区的设置不足以完全消除边缘误差。
　　边缘误差可通过设置大于细胞最大投影直径的保护区宽度来消除。但是较大的保护区宽度会影响屏幕上有效地测量区域。
　　采用上述保护区的方法能够有效地消除边缘误差，但是，在显微图像分析系统中我们往往还需要在测量细胞的同时，得出体视学上所需要的场参数。即图像框中所有细胞的面积之和与图像框的面积之比。
　　人为的误差是最不易发现的且随机出现的误差，这种误差有时会比测量的精确度高出数倍，使测量结果完全推动意义。如灰度阈值的人为不正确设置，人为的原因造成的定标错误或有时在采集图像时更换了物镜忘记了定标，测量中为了省事图快在较低倍率下测量。有些技术人员因为工作忙，在对组织切片中的肿瘤细胞进行手动测量时，不仔细地沿细胞边缘画线，而是粗糙地任意勾画等等。
　　在测量的样本比较规则，例如测量鸡红细胞，虫卵等样本时，通过统计结果或直方图可明显地看出一些人为的误差。有些不可能出现的特别大和特别小的数据，往往是相连的细胞和没有完全删除的二值化后留下的噪声点。而在一些本来大小相差就比较悬殊的样本，人为测量错了的数据就不易被发现。在MPIAS系统中，通过浏览被测细胞通常可发现很多测错了的杂质和相连的细胞。
　　在人为误差中，很大一部分误差是因为 工作不仔细造成的，工作人员只要本着对工作认真负责的态度是可以克服的。有些误差是要求工作人员了解一些统计学抽样的基本知识，通过严格的随机抽样是可以避免的。有关样本的抽样误差和图像视野的随机选择有关的书籍和文章已有详细讲解，这时里就不重复了。
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